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Personnel du CNR-MyRMA

Members of the National Reference Centre for Mycobacteria

NomFonction (medical biologist)
Site Sorbonne Université*cnrmyrma[a]cnrmyrma.fr
– Alexandra AubryPU-Praticien Hospitalier
– Alexandre GodmerMCU-PH
– Lorenzo GuglielmettiPraticien Attaché
– Esther GydéPraticien Hospitalier
– Corentin PoignonAssistant Hospitalo-Universitaire
– Jérôme RobertDirecteur, PU-Praticien Hospitalier
– Nicolas VezirisPU-Praticien Hospitalier
Site Bichat*cnrmyrma.bichat[a]cnrmyrma.fr
– Camille AllamPH
– Emmanuelle CambauResponsable, PU-Praticien Hospitalier
– Faiza MougariPH
– Zeina AwadPraticien Attaché
all these persons can be personally joined by mail at forname.lastname@cnrmyrma.fr
Personnel Technique*(lab technicians and administration)
Site Pitié-Salpêtrière Sorbonne Université
Catherine AsselotCadre Technique
Adline MichaudAssistante médico-administrative
Aurélie ChauffourIngénieure de recherche
Victor AndréTechnicien de Laboratoire
Jade Cao Van TuatTechnicienne de Laboratoire
Fadia CherguiTechnicienne de Laboratoire
Sabrina Goumghar°Technicienne de Laboratoire
Jessica MatillonTechnicienne de Laboratoire
Emmanuel MaurerTechnicien de Laboratoire
Gérald MillotTechnicien de Laboratoire
Sophie RousselTechnicienne de Laboratoire
Azadeh Saffarian°Ingénieure bio-informatique
Marieme DaboAdministration & Finances
Site Bichat
Melissa Nait-Chabane°Ingénieure de Recherche
Salim Absous° Ingénieur de Recherche
Théo Fouchet° Ingénieur de Recherche
Célia SicardTechnicienne de Laboratoire
Odile VissouarnTechnicienne de Laboratoire
Isabelle DUPRIEZAssistante médico-administrative
Equipe de Recherche Pitié-SUVoir ici
° Personnel CNR-MyRMA (ces personnels ne sont pas tous à 100%)
* Les autres personnels du CNR sont rattachés à l’hôpital ou à l’UFR de Médecine de référence et une partie variable de leur temps est attribuée au fonctionnement du CNR-MyRMA
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Surveillance de la résistance aux antituberculeux

La surveillance est assurée par le réseau AZAY-Mycobactéries* des laboratoires de CHU, en collaboration avec le CNRThe surveillance is performed by the AZAY-Mycobacteria sentinel network

Objectif de la surveillance
  • L’objectif de la surveillance est de collecter des informations sur la fréquence et les caractéristiques de la résistance primaire (chez les nouveaux cas de tuberculose) et secondaire (chez les cas déjà traités) aux antituberculeux en France
  • Cette surveillance est annuelle afin de suivre les tendances temporelles
Modalités de surveillance
  • La surveillance a débuté en 1995 dans le cadre des missions nationales du CNR-MyRMA
  • Chaque laboratoire de CHU volontaire collecte des informations sur chaque cas de tuberculose à culture positive ou PCR positive dans le cadre de son activité diagnostique de routine
  • Ces informations et les résultats des analyses sont anonymisés puis sont transmises une fois par an au coordinateur au CNR (Pr Jérôme Robert)
  • L’analyse et le rapport des données agrégées sont faits chaque année et disponibles dans les rapports annuels du CNR-MyRMA et sur le site du CNR-MyRMA tous les 2 ou 3 ans
Informations administratives
  • Cette surveillance est inscrite au registre des traitements de l’APHP sous le numéro 20250905111503
  • En cas de nécessité d’information complémentaire ou de réclamation, vous pouvez joindre le Pr Jérôme ROBERT (jerome.robert[a]aphp.fr), Directeur du CNR-MyRMA et coordinateur de cette surveillance

Version anglaise

Mise à jour le 1/10/2025

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Bactériologie – tuberculose

Activités d’expertise bactériologique pour le diagnostic de la tuberculose

Les activités d’expertise suivent le logigramme suivant en cas de suspicion de résistance à la rifampicine

Logigramme – prise en charge d’un prélèvement ou d’une souche avec suspicion de résistance à la rifampicine
  • Tout envoi de souche ou de matériel biologique doit respecter la réglementation
  • Souche de mycobactérie du complexe tuberculosis
    • Identification au sein du complexe tuberculosis quand les caractères culturaux ne sont pas typiques de M. tuberculosis
    • Contrôle de sensibilité aux antituberculeux de 1ère ligne en cas de difficulté d’interprétation des résultats des tests faits dans le laboratoire d’origine
    • Tests de sensibilité aux antituberculeux de 2ème ligne (kanamycine, amikacine, capréomycine, ethionamide, fluoroquinolones, bédaquiline, linézolide, cyclosérine, délamanide) et au pyrazinamide, en cas de résistance à la rifampicine
  • Détection moléculaire de la résistance aux antituberculeux
    • à partir d’une souche ou à partir d’un prélèvement dans lequel il y a plusieurs baar/champ (objectif x25, coloration à l’auramine)
    • Analyse du gène rpoB quand la souche est suspecte d’être résistante à la rifampicine
    • pour les souches MDR, analyse systématique de l’ensemble des gènes identifiés comme étant lié à une résistance antibiotique

En cas de résistance à un antituberculeux de première ligne autre que la rifampicine ou en cas d’intolérance à un antituberculeux de première ligne, les analyses suivent le logigramme suivant

  • Epidémiologie moléculaire : comparaison des souches
    • Systématique pour tous les cas de tuberculose à bacilles MDR
    • En cas de suspicion d’épidémie : en lien étroit avec les enquêtes communautaires ou hospitalières et les ARS, et CLAT
    • En cas de suspicion de contamination de laboratoire – l’analyse se fait après discussion approfondie du dossier avec le CNR
Logigramme – typage moléculaire de M.tuberculosis
Autres activités sur la tuberculose